細胞培養中的支原體檢測，分為工業檢測和實驗室檢測。

工業包括生物藥生產、CAR-T、干細胞治療、疫苗生產等，需要對主細胞庫、病毒收獲液、體外擴增的細胞等進行支原體檢查。該檢查的方法依據是藥典。

普通科研實驗室中的支原體檢測則需要保證細胞中沒有支原體污染，沒有詳細的方法規定。

那么，工業和科研檢支原體還有哪些區別呢？

檢測方法方面

工業可使用培養法、指示細胞培養法和NAT法（核酸擴增技術Nucleic acid testing）。NAT法最常見的就是PCR和熒光定量PCR。只限定了這三種。NAT在方法驗證后，可以替代前面兩種方法。適合CAR-T等的放行檢測。

科研則可采用各種方法，但一般不采用培養法，因為該方法耗時長，效率低?？蒲袡z支原體常見方法有PCR法、qPCR法、酶熒光法、恒溫擴增法、DNA染色法、細胞感應法等。

用途方面

工業檢支原體用于過程控制、放行檢測。生產前和生產后的成品都需要檢。

科研檢支原體是避免支原體污染細胞，干擾實驗，一般是一周就要監測一次。

污染程度

工業上支原體污染風險主要是存在于細胞和成品中，需檢測的樣本，不一定是含血清的培養體系。在該過程中，如果發生支原體污染，通常情況下，支原體含量會比較低，因而需要方法的靈敏度高，達到10CFU/ml。

科研上支原體污染的風險，主要是存在于細胞培養過程中。科研過程中，如果發生支原體污染，往往因檢測不及時而更容易被忽視。再加上培養液中含有血清，支原體繁殖較快，一旦出現癥狀時，支原體的污染程度已經處于較高的水平，因而對方法的靈敏度相對會低一些，而更看重方便程度。

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